veganojustice

Dalam Pembenahan….

BAB I

PENDAHULUAN

 

1.1  Latar Belakang

Perbanyakan tanaman dapat dilakukan secara generatif maupun vegetatif.

Perbanyakan vegetatif, mempunyai pengertian perbanyakan tanaman dengan menggunakan organ vegetatif tanaman seperti batang yang mempunyai tunas samping (aksilar/lateral) dan mata tunas dari induk yang terpilih.  Induk terpilih misal mempunyai warna dan corak bunga yang indah dan belum pernah ada, warna daun bervariasi.   Kemudian teknik memperbanyak tanaman tersebut dengan cara stek batang, cangkok, sambung (grafting) dan okulasi.

Hasil akhir dari perbanyakan vegetatif ini adalah bibit atau tanaman yang sama dengan induk yang terpilih yang telah dicontohkan di atas atau diistilahkan dengan fotocopy atau true to type.

Pemilihan perbanyakan di atas tentunya juga terkait dengan tujuannya, apabila menghendaki tanaman yang mempunyai variasi/ keragaman sifat/karakter lain dari normalnya, maka perbanyakan generatif yang dipilih.  Apabila menginginkan tanaman hias yang mempunyai kesamaan dengan induk yang terpilih, maka perbanyakan vegetatif yang dipilih.

Perbanyakan vegetatif diperlukan untuk tanaman dan kultivar yang tidak menghasilkan biji secara teratur atau tidak bisa menghasilkan biji.

 

1.2  Tujuan

• Mengetahui pengertian perbanyakan vegetatif alami dan buatan
• Memahami dan mempraktekan cara dari macam-macam perbanyakan vegetatif alami dan buatan
• Mempelajari dan memahami faktor-faktor yang mempengaruhi

perbanyakan vegetatif alami dan buatan

 

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Perbanyakan Vegetatif Alami

            2.1.1 Pengertian Perbanyakan Vegetatif Alami

• Perbanyakan vegetatif dimana mengambil bahan tanam dari organ tubuh tanaman induk yang merupakan hasil pertumbuhan tanaman (bagian generatif) dan sifat dari keturunannya pasti sama dengan induknya.

(Abdurahman,Deden.2008)

• Perbanyakan tanaman tanpa melalui perkawinan atau tidak menggunakan biji tanaman induk yang terjadi secara alami tanpa campur tangan manusia.

(Rahardja & Wiryanta.2003)

• Plant propagation using vegetative organs such as stems that have a side shoots (axillary / lateral) and buds from the selected parent.

(Perbanyakan tanaman dengan menggunakan organ vegetatif tanaman seperti batang yang mempunyai tunas samping (aksilar/lateral) dan mata tunas dari induk yang terpilih.)

(Hartmann et al.1997)

 

            2.1.2 Macam Perbanyakan Vegetatif Alami (PENGERTIAN DAN CONTOH )

• Tunas adventif
  • cocor bebek.
  • kesemek,
  • kersen,
  •  ,cemara
  • dan sukun.
  • Pembentukan tunas
    • pakis haji (cycas rumphii),
    • bamboo(bambusa sp),
    • pisang (musa paradisiaca),
    • nanas,
    • palem,
    • Umbi lapis
      • bawang merah (allium cepa),
      • bawang putih (allium sativum),
      • bawang daun (allium fistulosum),
      • bunga bakung (crinum asiaticum), dan
      •  bunga tulip
      • Umbi batang
        • kentang (solanum tuberrodum),
        • ubi jalar(ipomoea batatas),
        • caladium
        • gadung (dioscorea hispida), dan
        • gambili (dioscorea aculata)
        • Rhizome
          • lengkuas (alpina officinarum),
          • jahe (zingiber officinale),
          • kunyit ( curcuma domestica),
          • temulawak, dan
          • lidah mertua (sansivera sp)
        • Stolon
          • rumput teki(cyperus rotundus)
          • rumput gajah
          • stroberi
          • arbei
          • dan rumput pantai (spinifex sp)

STOP

 (Ashari.1995)

 

           

 

2.1.3 Faktor yang mempengaruhi Perbanyakan Vegetatif Alami

1. Faktor Suhu / Temperatur Lingkungan
Tinggi rendah suhu menjadi salah satu faktor yang menentukan tumbuh kembang, reproduksi dan juga kelangsungan hidup dari tanaman. Suhu yang baik bagi tumbuhan adalah antara 22 derajat celcius sampai dengan 37 derajad selsius. Temperatur yang lebih atau kurang dari batas normal tersebut dapat mengakibatkan pertumbuhan yang lambat atau berhenti

2. Faktor Kelembaban / Kelembapan Udara
Kadar air dalam udara dapat mempengaruhi pertumbuhan serta perkembangan tumbuhan. Tempat yang lembab menguntungkan bagi tumbuhan di mana tumbuhan dapat mendapatkan air lebih mudah serta berkurangnya penguapan yang akan berdampak pada pembentukan sel yang lebih cepat.

3. Faktor Cahaya Matahari
Sinar matahari sangat dibutuhkan oleh tanaman untuk dapat melakukan fotosintesis (khususnya tumbuhan hijau). Jika suatu tanaman kekurangan cahaya matahari, maka tanaman itu bisa tampak pucat dan warna tanaman itu kekuning-kuningan (etiolasi). Pada kecambah, justru sinar mentari dapat menghambat proses pertumbuhan.

4. Faktor Hormon
Hormon pada tumbuhan juga memegang peranan penting dalam proses perkembangan dan pertumbuhan seperti hormon auksin untuk membantu perpanjangan sel, hormon giberelin untuk pemanjangan dan pembelahan sel, hormon sitokinin untuk menggiatkan pembelahan sel dan hormon etilen untuk mempercepat buah menjadi matang.

(Rochiman.1973)

 

2.2 Perbanyakan Vegetatif Buatan

2.2.1 Pengertian Perbanyakan Vegetatif Buatan

• Perbanyakan tanaman secara buatan dengan campur tangan manusia.

(Suwanto.2007)

• Sekumpulan teknik untuk menghasilkan individu baru tanpa melalui perkawinan dengan bantuan manusia.

(Pahan.2006)

• Way through vegetative reproduction (without mating), which does not occur naturally but was made or occurred accidentally by humans.

(Cara reproduksi secara vegetatif (tanpa kawin) yang tidak terjadi secara alami melainkan dibuat atau disengaja terjadi oleh manusia)

(Anonymous.2011)

 

            2.2.2 Macam Perbanyakan Vegetatif Buatan (PENGERTIAN DAN CONTOH)

• Cangkok
  • jambu
  • sawo
  • rambutan
  • mangga
  • jeruk
  • Okulasi
    • mangga,
    • Ø  karet
    • lengkeng
    •  durian, dan
    • rambutan.

 

• Runduk
  • anyelir
  • tanaman apel
  • alamanda
  • durian dan
  • singkong.
  • Stek
    • teh
    • ubi kayu
    • tebu
    • tanaman pagar
    • sirih
    • Sambung
      • Manggis
      • Kopi
      • Kakao
      • Keluwih
      • Mangga

 

 

(Zaubin.2003)

 

            2.2.3 Faktor yang mempengaruhi Perbanyakan Vegetatif Buatan

Faktor Intern :

1. dormansi bahan tanam (dapat dipecahkan dengan pemberian kelembaban tinggi)
2. ZPT (dapat memacu pertumbuhan akar dan tunas)

Faktor Ekstern:

1. suhu (bahan tanam tidak tahan dengan suhu tinggi)
2. kelembaban (pada awal masa tanam dibutuhkan kelembaban yang tinggi)
3. cahaya (pada awal pertumbuhan tunas dan akar dibutuhkan cahaya yang tidak banyak, maka perlu diberi naungan)
4. jamur dan bakteri (biasanya sangat peka terhadap keadaan yang lembab, bahan tanam yang terlukai sangat rawan terhadap serangan jamur dan bakteri sehingga menyebabkan kebusukan)

 

(Anonim.1992)

 

 

 

BAB III

METODOLOGI

3.1 Alat, Bahan, dan Fungsi

• Alat

ü  Curter/pisau

ü  Plastik

ü   

• Bahan

ü  Tanaman jeruk

3.2 Langkah Kerja

       3.2.1 Perbanyakan vegetative Alami (anakan,umbi batang, stolon)

       3.2.2 Perbanyakan vegetative Buatan

              a. Grafting

 

  b. Okulasi

1. Memilih bibit dari biji yang sudah berumur 6-8 bulan sebagai batang bawah.
2. “Jendela” okulasi dibuat pada ketinggian 10 cm dari permukaan tanah dengan ukuran jendela 1 cm x 5 cm
3. Mata entres yang akan digunakan sebagai batang atas dipilih dari tunas cabang yang sehat.
4. Ukuran mata entres yang telah diambil dari cabang entres dibuat lebih kecil dari ukuran “jendela” okulasi.
5. Kemudian mata entres ditempelkan atau dimasukkan didalam jendela, diikat rapat dengan menggunakan tali rafia atau plastik.
6. Periksalah okulasi 2-3 minggu kemudian.Okulasi berhasil tumbuh bila warna tunas tetap hijau. Bila berwarna cokelat berarti okulasi gagal.

 

  c. Stek

 

1.      Stek ini diambil dari batang atau cabang pohon induk yang akan kita perbanyak dan pilih batang yang tidak terlalu tua dan juga tidak terlalu muda

2.      Gunting stek yang digunakan harus tajam agar bekas potongan rapi. Bila kurang tajam batang bisa rusak atau memar.

3.      Pada saat mengambil stek batang, pohon induk harus dalam keadaan sehat dan tidak sedang bertunas.

4.      Yang dijadikan stek biasanya adalah bagian pangkal dari cabang. Pemotongan cabang diatur kira-kira 0.5 cm di bawah mata tunas yang paling bawah dan untuk ujung bagian atas sejauh 1 cm dari mata tunas yang paling atas.

5.       Kondisi daun pada cabang yang hendak diambil sebaiknya berwarna hijau tua. Dengan demikian seluruh daun dapat melakukan fotosintesis yang akan menghasilkan zat makanan dan karbohidrat. Nantinya zat ini akan disimpan dalam organ penyimpanan antara lain di batang. Karbohidrat pada batang ini penting sebagai sumber energi yang dibutuhkan pada waktu pembentukan akar baru.

6.      Ukuran besar cabang yang diambil cukup sebesar kelingking. Diameter sekitar 1 cm dengan panjang antara 10-15 cm. Cabang tersebut memiliki 3-4 mata tunas.

7.       Kondisi batang pada saat pengambilan berada dalam keadaan setengah tua dengan warna kulit batang biasanya coklat muda

 

 

 

 

 

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

      4.1.1 Perbanyakan Vegeatif Alami (sesuai tabel pengamatan)

 

      4.1.2 Perbanyakan Vegetatif Buatan (sesuai tabel pengamatan)

 

 

4.2 Pembahasan

       4.2.1 Perbanyakan Vegeatif Alami

1. a.    Anakan

Pada praktikum ini tanaman yang digunakan adalah kentang

 

1. b.   umbi batang

Pada praktikum ini tanaman yang digunakan adalah kentang

 

1. c.    stolon

Pada praktikum ini tanaman yang digunakan adalah stroberi

 

Menurut Redaksi (2007),

      4.1.1 Perbanyakan Vegeatif Buatan

a. Grafting

Pada Percobaan perbanyakan dengan cara  grafting mengalami kegagalan, yaitu mata entres berwarna coklat dan kering

Menurut Redaksi (2007),faktor – faktor yang mempengaruhi keberhasilan grafting,yaitu:

ü  Faktor Tanaman
Kesehatan batang bawah yang akan digunakan sebagai bahan perbanyakan perlu diperhatikan. Pada batang bawah yang kurang sehat, proses pembentukan kambium pada bagian yang dilukai sering terhambat. Keadaan ini akan sangat mempengaruhi keberhasilan penyambungan. Batang bawah berpengaruh kuat dalam pertumbuhan dan perkembangan tanaman, sehingga pemilihan tanaman yang digunakan sebagai batang bawah sama pentingnya dengan pemilihan varietas yang akan digunakan sebagai batang atas.
Berhasilnya pertemuan entres dan batang bawah bukanlah jaminan adanya kompatibilitas pada tanaman hasil sambungan. Sering terjadi perubahan pada entres maupun pada tanaman hasil sambungan, misalnya pembengkakan pada sambungan, pertumbuhan entres yang abnormal atau penyimpanan pertumbuhan lainnya, dimana keadaan ini disebut inkompatibel. Hal ini dapat disebabkan oleh perbedaan struktur antara batang atas dan batang bawah atau ketidakserasian bentuk potongan pada sambungan.Sedangkan batang yang mampu menyokong pertautan dengan baik dan serasi disebut kompatibel.

ü  Faktor Pelaksanaan
Faktor pelaksanaan memegang peranan penting dalam penyambungan. Kecepatan penyambungan merupakan pencegahan terbaik terhadap infeksi penyakit. Pemotongan yang bergelombang dan tidak sama pada permukaan masing-masing batang yang disambungkan tidak akan memberikan hasil yang memuaskan.
Kehalusan bentuk sayatan dari suatu bagian dengan bagian lain sangat penting untuk mendapatkan kesesuaian posisi persentuhan kambium. Ukuran batang bawah dengan batang atas hampir sama sangat diharapkan agar persentuhan kambium sangat banyak terjadi. Apabila batang atas lebih kecil dari batang bawah, maka salah satu sisi kambium harus cepat. Cara penyambungan suatu tanaman keberhasilannya lebih banyak dibandingkan dengan metode lain. Disamping itu ketrampilan dan keahlian dalam pelaksanaan penyambungan maupun penempelan serta ketajaman alat-alat yang digunakan juga sangat berpengaruh terhadap keberhasilan pekerjaan tersebut

ü  Faktor Lingkungan
Cahaya matahari sangat kuat akan berpengaruh terutama pada saat pelaksanaan penyambungan. Oleh karena itu penyambungan dilakukan pada waktu pagi hari atau sore hari. Penyambungan sebaiknya dilakukan pada musim kemarau. Selain untuk menghindari kebusukan, curah hujan pada musim kemarau batang sedang aktif mengalami pertumbuhan serta entres yang tersedia cukup masak.

 

  b. Okulasi

Pada Percobaan perbanyakan dengan cara okulasi mengalami kegagalan, yaitu daun pada tunas layu dan berwarna coklat.

Menurut Redaksi (2007),kegagalan ini bisa disebabkan oleh berbagai sebab, yaitu diantaranya karena pelaksanaan okulasi disiang hari, kurang telitinya dalam memilih cabang, media yang terlalu kering karena jarangnya dilakukan penyiraman dan tanaman langsung terkena sinar matahari yang kemudian berakibat pada kelayuan dan pada bagian okulasi daun berubah warna menjadi coklat, serta alat yang digunakan untuk okulasi kurang bersih. Seharusnya, perbanyakan secara okulasi ini disarankan penyiramannya cukup (media cukup basah). Tetapi hal tersebut bisa diatasi dengan menempel di tempat yang teduh, terhindar dari sinar matahari langsung. Kebersihan alat okulasi, silet yang akan digunakan langsung kita belah dua saat masih dalam bungkusan kertas, sehingga silet/cutter/pisau kerat  kita tetap dalam kondisi bersih dan tidak berkarat. Cabang untuk okulasi ini sebaiknya tidak berdaun (daunnya sudah rontok). Entres yang baik adalah yang cabangnya dalam keadaan tidak terlalu tua dan juga tidak terlalu muda (setengah berkayu).Warna kulitnya coklat muda kehijauan atau abu-abu muda. Entres yanng diambil dari cabang yang terlalu tua pertumbuhannya lambat dan persentase keberhasilannya rendah. Besar diameter cabang untuk entres ini harus sebanding dengan besarnya batang bawahnya.

  c. Stek

Cara perbanyakan dengan metode stek juga mengalami kegagalan, hal ini kemungkinan disebabkan karena batang stek yang masih muda, temperatur yang terlalu tinggi, kurangnya ketersediaan air bagi batang yang telah distek.

Menurut Redaksi (2007),Pada dasarnya cara perbanyakam stek akan kurang menguntungkan jika bertemu dengan kondisi tanaman yang sukar berakar, akar yang baru terbentuk tidak tahan stress lingkungan dan adanya sifat plagiotrop. Plagiotrop ialah rantingranting yang tumbuh dari batang orthotrop, yang jumlahnya banyak sekali. Ranting-ranting ini pendek, agak kecil dan tak melekat pada tajar sebab masingmasing, bukunya tak berakar lekat. Pada setiap buku tumbuh sehelai daun yang berhadaphadapan, dan disinilah akan tumbuh malai bunga. Cabang plagiotrop ini tumbuhnya selalu ke samping (lateral), dan pada cabang plagiotrop ini masih bisa tumbuh ranting-ranting lagi. Inilah bagian-bagian yang selalu mengeluarkan malai bunga ataubuah,maka ia juga disebut cabang-cabang buah. ( tanaman yang masih bertahan. Kondisi batang pada saat pengambilan berada dalam keadaan muda dengan warna batang setengah hijau atau setengah tua dengan warna kulit batang biasanya coklat muda. Pada saat ini kandungan karbohidrat dan auxin (hormon) pada batang cukup memadai untuk menunjang terjadinya perakaran setek. Pada batang yang masih muda, kandungan karbohidrat rendah tetapi hormonnya cukup tinggi. Pada kasus ini hasil setekan tumbuh tunas terlebih dahulu. Padahal seharusnya setek yang baik harus tumbuh akar dulu. Oleh karena itu, pada setek yang batangnya muda memang akan sering terjadi kegagalan. Selain itu kegagalan dalam stek dapat terjadi karena gunting stek tidak tajam sehingga batang yang akan distek memar, Hal ini mengundang bibit penyakit masuk ke bagian yang memar, sehingga bisa membusukkan pangkal setek serta kondisi lingkungan dan status fisiologi yang penting bagi tanaman sumber, diantaranya adalah:

a.       Status air. Stek lebih baik diambil pada pagi hari dimana bahan stek dalam kondisi turgid.

b.       Temperatur. Tanaman stek lebih baik ditumbuhkan pada suhu 12°C hingga 27°C.

c.       Cahaya. Durasi dan intensitas cahaya yang dibutuhkan tamnaman sumber tergantung pada jenis tanaman, sehingga tanaman sumber seharusnya ditumbuhkan pada kondisi cahaya yang tepat.

 

 

 

 

 

BAB V

PENUTUP

5.1 Kesimpulan

Untuk mendapatkan bibit yang berkualitas yang sifatnya sama dengan induknya serta dapat memberi hasil secara cepat maka dapat dilakukan dengan cara perbanyakan secara vegetatif buatan. Namun perlu diperhatikan kondisi batang yang akan diperbanyak, perlakuan saat perbanyakan  serta perlu memperhatikan  kondisi lingkungan tumbuh sekitar

5.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

Abdurahman….

Anonymous.2011

 

 

 

Rahardja…..

Redaksi…

 

Suwanto….

Prosiding seminar

 

Dala

BAB I

PENDAHULUAN

1.1  LATAR BELAKANG

Ekstraksi diperlukan karena biasanya benih tidak dipanen secara langsung. Biasanya pengunduhan dilakukan terhadap buahnya. Dikenal dua macam ekstraksi benih yaitu ekstraksi kering yang dilakukan terhadap buah berbentuk polong (Acacia sp, Paraserianthes falcataria) dan jenis-jenis yang memiliki daging buah yang kering (Swietenia macrophylla), sedangkan ekstraksi basah dilakukan terhadap jenis-jenis yang memiliki daging buah yang basah seperti Gmelina arborea, Melia azedarach dan Azadirachta indica.

Pengeringan benih dimaksudkan untuk menurunkan kadar air sampai batas keseimbangan dengan udara luar disekitarnya dan siap untuk dilakukan proses selanjutnya.Benih bersifat hygroskopis, sehingga jika benih diletakan didalam ruangan dengan RH rendah, maka benih akan kehilangan air dan terjadi penurunan kadar air. Namun sebaliknya jika benih diletakan dalam ruangan yang RH tinggi, maka kadar air benih akan bertambah atau meningkat.Selain bersifat hygroskopis,benih juga selalu ingin berada dalam kondisi equilibrium (keseimbangan) dengan kondisi disekitarnya.Pengeringan benih merupakan proses perpindahan air dari dalam benih kepermukaan benih, dan kemudian air yang berada dipermukaan benih tersebut akan diuapkan jika RH ruangan lebih rendah. Proses ini akan terjadi hingga keseimbangan kadar air benih dengan RH lingkungannya tercapai..Pengeringan seringkali merupakan faktor yang sangat kritis pada tahap pengolahan benih terutama kalau musim penghujan.

1.2  TUJUAN

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Definisi Ekstraksi Benih

• Kegiatan yang bertujuan untuk memisahkan benih dari buah.

(Kuswanto.2003)

• Pemisahan biji dari daging buah, kulit benih, polong, kulit buah, malai, tongkol dan sebagainya dengan tujuan agar benih tersebut dapat digunakan untuk bahan tanam yang memenuhi persyaratan.

(Kamil. 1982)

• Proses pengeluaran benih dari buah, polong, kerucut, kapsul atau bahan pembungkus benih lainnya

(Nurhayati.1997)

• Activities out and clean the seeds from other parts of the fruit, such as stalks, skin and flesh of fruit.

Kegiatan mengeluarkan dan membersihkan benih dari bagian-bagian lain buah,       seperti tangkai, kulit dan daging buah.

(ISTA.1985)

• Activities aimed at separating the seeds from the fruit (if the seed that is downloaded is still a seed that has other components of the fruit).

Kegiatan yang bertujuan untuk memisahkan benih dari buah (apabila benih yang    diunduh masih merupakan benih yang memiliki komponen lain dari buah).

(AS & PM.,2000)

2.2 Faktor-Faktor yang Mempengaruhi Ekstraksi Benih

 

(Kamil, J, 1982)

 

2.3 Metode Ekstraksi Benih

• Metode Basah

            Ekstraksi basah dilakukan terhadap jenis-jenis yang memiliki daging buah yang basah seperti Gmelina arborea, Melia azedarach dan Azadirachta indica.

• Fermentasi

Benih yang telah dipisahkan dari daging buahnya, dimasukkan ke dalam wadah dan apabila perlu ditambah dengan sedikit air, wadah ditutup dan disimpan selama beberapa hari. Adapun wadah yang digunakan untuk fermentasi benih dipilih wadah yang tidak korosif terhadap asam, misalnya terbuat dari logam stainless steel, kayu ataupun plastic. Lama fermentasi tergantung pada tinggi rendahnya suhu selama fermentasi. Apabila fermentasi dilakukan pada temperature 24⁰ C-27⁰ C maka diperlukan waktu 1-2 hari., sedangkan apabila digunakan temperature 15⁰ C-22⁰C, dbutuhkan waktu 3-6 hari., tergantung pada jenis benih yang difermentasikan. Selama fermentasi bubur (pulp) perlu diaduk guna memisahkan benih dari massa pulp dan mencegah timbulnya cendawan. Setelah fermentasi selesai, bisanya benih akan tenggelam ke dasar wadah untuk memudahkan pemisahan benih dari massa pulp perlu ditambahkan air agar pulp menjadi encer. Setelah benih difermentasi benih dicuci dengan air bersih hingga semua zat penghambat hilang, yang ditandai dengan permukaan benih yang sudah tidak licin. Selanjutnya benih tersebut dikering anginkan pada suhu 31⁰ C hingga diperoeh kadar air tertentu sesuai dengan peraturan yang aman bagi penyimpanan

(Pitojo, 2005).

• Mekanis

Pada usaha skala besar, pemisahan benih dari daging buahnya akan kurang efisien jika menggunakan tenaga manual. Proses pembijian dilakukan dengan menggunakan mesin (seed extraction) yang dirancang untuk memisahkan dan membersihkan benih dari pulp yang mengandung inhibitor.

(Kamil, J, 1982)

• Kimiawi

Menggunakan zat kimia misalnya HCL 35%, dengan dosis 5 liter HCL 35% dicampur dengan 100 liter air. Kemudian larutan HCL digunakan untuk merendam pulp. Setelah direndam dan diaduk selama 30 menit, massa pulp akan mengambang dipermukaan sehingga mudah dipisahkan dari benih yang tenggelam didasar wadah. Setelah dipisahkan benih dicuci dengan air hingga bekas pencuciannya bersifat netral (dapat dicek dengan menggunakan kertas lakmus).

(Kuswanto.2003)

            Pemisahan biji setelah fermentasi dapat dilaukan dengan menggunakan sodium karbonat 10% selama dua hari, namun cara tesebut jarang digunakan oleh perusahaan benih, pemisahan biji dalam jumlah banyak dapat dilakukan secara cepat degan menggunakan HCL 1 N sebanyak 7-8 ml/l larutan, dibiarkan selama 1-2 jam. Namun jika tidak dilakukan secara tepat perlakuan dengan bahan kimia tersebut dapat menurunkan daya kecambah .

(Pitojo, 2005).

            Memanfaatkan kapur tohor sebagai bahan untuk ekstraksi basah menunjukkan bahwa pada konsentrasi kapur tohor 20 g/l dengan lama perendaman 30 menit memberikan potensi tumbuh terbaik (96%) untuk benih manggis. Manggis dan ketimun termasuk kedalam tipe buah berdagung dan berair sehingga diharapkan kapur tohor juga dapat dipalikasikan dalam ekstraksi benih ketimun. Adapun keuntungan dari penggunaan kapur tohor adalah prosesnya berjalan cepat, harganya murah 2000/kg dapat mencegah terjadinya pembusukan yang dapat mempengaruhi kualitas benih terutama viabilitasnya dan tidak menyebabkan perubahan warna.

(Murniati.1996)

• Metode Kering

Ekstraksi kering yang dilakukan terhadap buah berbentuk polong (Acacia sp, Paraserianthes falcataria) dan jenis-jenis yang memiliki daging buah yang kering (Swietenia macrophylla) yang dapat dilakukan secara manual atau dengan mesin.

(Kuswanto.1997)

2.4 Manfaat Ekstraksi Benih

• Memisahkan benih dari buah
• Memisahkan benih dari kotoran lainnya
• Meningkatkan kemurnian benih.

(Sadjad.1975)

2.5 Tujuan Pengeringan

Mengurangi kadar air benih sampai batas aman terutama yang berada di daerah bersuhu dan kelembaban tinggi dimana perkembangan mikroorganisme dan kegiatan enzim yang dapat menyebabkan pembusukan terhambat atau terhenti.

(Sutopo. 2002)

2.6 Metode Pengeringan

Pengeringan benih dapat dilakukan dengan cara sebagai berikut:

• Pengeringan dalam karung (bag driers)

Pengeringan benih dalam karung dilakukan bila benih yang

akan dikeringkan berasal dari banyak varietas atau bila volume

benih yang diproduksi kecil. Karung yang digunakan terbuat dari

bahan yute, sehingga dapat dilalui udara untuk proses

pengeringan.

• Pengeringan dalam Kotak (box driers)

Pengeringan dalam kotak merupakan modifikasi dari bag driers dan metode yang paling lazim digunakan dalam pengeringan benih. Bahan box berupa bahan lokal yang dimasukan ke dalam wadah dari logam yang berlubang-lubang

atau kawat.

• Bin driers

Dilakukan jika benih yang diperoleh berasal dari bulk dengan jumlah lebih dari 5 ton

• Flat storage drying

Jika benih yang dihasilkan banyak dan hanya satu varietas saja

 

(Wahyu dan Asep.1995)

• Pengeringan secara alami (natural drying)

Pengeringan ini dilakukan penjemuran dengan panas matahari secara langsung. Perlu penanganan aktif, untuk menghindari :
a. Pengaruh suhu yang tinggi
b. Pengeringan tidak merata
c. Kulit benih pecah-pecah.

• Pengeringan buatan (artificial drying)
  Pengeringan ini dengan mesin atau alat dapat dilakukan, apabila :
  a. Mencapai maksud pengeringan sesuai yang diharapkan;
  b. Tercapai pengeringan tanpa tergantung pada kondisi cuaca;
  c. Kualitas benih terjaga.

Perlu penanganan aktif, untuk menghindari :
a. Pengaruh suhu yang tinggi
b. Pengeringan tidak merata
c. Kulit benih pecah-pecah.

(Kamil. 1982)

2.7 Manfaat Pengeringan

• Meningkatkan daya simpan benih.
• Mempertahankan viabilitas benih.
• Menghasilkan benih berkualitas
• Mempertahankan daya fisiologi benih.
• Menambah nilai ekonomis.

(Sutopo. 2002)

BAB III

METODE

3.1 Alat, Bahan dan Fungsi

3.2 Langkah Kerja

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

4.2 Pembahasan

BAB V

PENUTUP

5.1 Kesimpulan

5.2 Saran

DAFTAR PUSTAKA

            AS & PM.,2000. PVP Status: PVP Asia in balance. Asia Seed & Planting Material, 7 (3) : 18 – 19

ISTA, 1985. International Rules for Seed Testing: Rules 1985. Seed Science and Technology, 13 (2) : 299 – 355.

Kamil, J, 1982, Teknologi Benih I, Padang: Universitas Andalas

Kuswanto, Hendarto. 1997. Analisis Benih. Yogyakart:Andi

Kuswanto,Hendarto. 2003, Teknologi Pemprosesan, Pengemasan dan Penyimpanan Benih. Yogyakarta: Kanisius

Murniati,E.1996. Informasi Hasil Penelitian Pengaruh faktor internal dan eksternal terhadap viabilitas benih kemiri (Aleurites moluccana Willd.). Keluarga Benih 7(1):59-65

Nurhayati, K. 1997. Pengaruh Ukuran dan Saat perkahan Buah Pada Proses Ekstraksi terhadap Perkecambahan dan Pertumbuahan Semai Khaya anthoteca C.DC. Skrpisi. Bogor. Jurusan Manajeman Hutan Fakultas Kehutanan Institut Pertanian Bogor.

Pitojo Setijo, 2005. Benih Kacang Tanah. Yogyakarta: Kanisius

Sadjad, Syamsoe’oed. 1975. Dasar-dasar Teknologi Benih. Bogor: IPB

Sutopo, Lita. 2002. Teknologi Benih. Jakarta: PT. Raja Grafindo Persada.

Wahyu, C.M. dan Asep Setiawan. 1995. Produksi benih.Jakarta: Bumi Aksara

Dalam Pembenahan…

BAB I

PENDAHULUAN

 

1.1  Latar Belakang

1.2  Tujuan

• mampu melaksanakan pengujian viabilitas dan vigor benih terutama benih tanaman pangan
• mengetahi criteria kecambah normal dan abnormal
• mengetahui komponen yang diamati dalam pengujian viabilitas dan vigor benih

 

BAB II
TINJAUAN PUSTAKA

2.1  Definisi

2.1.1 Viabilitas

• Viability is if the seed lot has a normal growth at optimum conditions.

(Apabila benih lot memiliki pertumbuhan normal pada kondisi optimum).

(Sadjad.1994)

• Viability is the ability of the seeds germinate and produce normal seedlings in optimum environmental conditions.

(Viabilitas adalah kemampuan benih berkecambah dan menghasilkan kecambah normal dalam kondisi lingkungan yang optimum).

()

• Viabilitas adalah kemampuan benih tumbuh normal dalam kondisi  yang optimum

 ()

2.1.2 Vigor

• Vigor is the ability of seeds to grow normally in the sub-optimal environmental conditions.

(Kemampuan benih untuk tumbuh normal pada keadaan lingkungan yang sub optimal).

(Sutopo.1984)

• Viability suboptimum (vigor) is the ability of seeds to grow into plants that produce normal in optimum condition or can be stored in conditions that suboptimum save and hold the old store in an optimum state

(Viabilitas suboptimum (vigor) merupakan kemampuan benih untuk tumbuh menjadi tanaman yang berproduksi normal dalam keadaan optimum atau mampu disimpan dalam kondisi simpan yang suboptimum dan tahan simpan lama dalam keadaan yang optimum).

(Sadjad.2004)

• Vigor benih adalah sejumlah karakter yang menentukan tingkatan kemapuan aktivitas dan penampilan benih selama perkecambahan dan munculnya kecambah, juga mencerminkan daya simpan benih.

2.2  Jenis Substrat dalam uji Viabilitas

Umumnya media yang banyak digunakan dan direkomendasikan dalam pengujian daya kecambah adalah:

1. Kertas Substrat

Kertas Substrat merupakan bahan yang praktis tidak banyak memerlukan tempat, mudah menilai struktur-struktur penting kecambah dan mudah distandarisasi. Jenis substrat kertas yang dapat digunakan dalah kertas merang, kertas saring, kertas buram,dan sebagainya.

2. Media pasir

Pasir sebagai media perkecambahan harus memenuhi syarat :

• Lolos dalam saringan ? 0,8 mm dan tertahan dalam saringan 0,50 mm
• pH = 6,0 – 7,5

Pasir sebagai media kecambah, sebelum digunakan diayak lebih dahulu untuk mendapatkan butiran pasir dengan ukuran sesuai anjuran, kemudian dicuci untuk menghilangkan tanahnya dan yang terakhir disterilkan.

3. Media Tanah

Tanah yang digunakan sebagai media perkecambahan harus mempunyai sifat mampu menyimpan air dan aerasi cukup. Untuk tanah yang berstruktur lempung dapat dicampur dengan pasir dan kompos dengan perbandingan tertentu agar media cukup remah. Kondis fisik tanah untuk media perkecambahan sangat penting bagi berlangsungnya benih berkecambah hingga menjadi tanaman dewasa. Benih akan terhambat perkecambahannya apabila tanah yang digunakan padat, karena benih susah menembus kepermukaan tanah.Media tanah digunakan apabila media kertas atau pasir dalam pengujian daya kecambah tidak sesuai dengan benih yang diuji.

2.3  Metode Uji Viabilitas

Pengujian viabilitas benih meliputi metode uji secara langsung dan tidak langsung. Dalam metode uji secara langsung kita dapat mengetahui dan menilai struktur-struktur penting kecambah secara langsung. Sedangkan metode uji secara tidak langsung dapat diketahui mutu hidup benih yang ditunjukkan melalui gejala metabolisme.

Untuk metode uji secara langsung diperlukan substrat pengujian, dapat berupa kertas, pasir, tanah dan sebagainya. Metode uji dengan substrat sebagai tempat, lebih cepat dan lebih mudah menilai struktur-struktur penting kecambah dan dapat dengan mudah distandarisasi.

Metode uji dapat dilakukan untuk mendapatkan uji daya berkecambah, dan kekuatan tumbuh, hal ini tergantung pada kondisi lingkungan pengujian benih.

Metode Uji Viabilitas Benih secara Langsung

A. Menggunakan Substrat Kertas.

1. Metode Uji daya berkecambah.

a. UDK, UDKm

b. UAK, UAKm

c. UKD, UKDp

2. Metode Uji kekuatan tumbuh.

a. UKDp

b. UKDd

B. Menggunakan substrat pasir, tanah pecahan bata merah dan sebagainya.

1. Metode Uji daya Berkecambah / daya tumbuh

2. Metode Uji kekuatan tumbuh.

Metode Uji Viabilitas Benih Secara Tidak Langsung

A. Pengujian Viabilitas benih secara Biokhemis.

1. Uji Cepat Viabilitas Benih dengan Tetrazholium)

B. Penetapan Berat 1000 butir.

•  Metode Uji Viabilitas dengan Substrat Kertas.

1. Metode Uji daya kecambah

a. UDK (Uji Diatas Kertas), UDKm (Uji Diatas Kertas dimiringkan).

Dengan UDK, UDKm dimaksudkan untuk menguji benih diatas lembar substrat. Metode ini sangat baik digunakan untuk benih yang membutuhkan cahaya untuk perkecambahannya. Benih ditanam diatas lembar substrat yang diletakkan pada petridish atau cawan plastik. Petridish dapat ditutup atau dibuka, tergantung pada ukuran besarnya benih. untuk benih sebesar padi, petridish dibuka, sedangkan sebesar tembakau ditutup. Meletakkan petridish pada trays di germinator dapat secara dimiringkan yaitu dengan memiringkan letak trays di germinator, sehingga metode menjadi UDKm.

b. UAK (Uji Antar Kertas), UAKm (Uji Antar Kertas dimiringkan).

UAK dimaksudkan menguji benih dengan menanam benih diantara lembar substrat, kemudian dilipat. Metode ini digunakan bagi benih yang tidak peka terhadap cahaya untuk perkecambahannya. Misalnya benih padi, sorghum, bayam dan sebagainya. Seperti pada UDK, metode UAK dapat dilakukan secara dimiringkan, yaitu dengan memiringkan letak trays dialat pengecambah benih, metode menjadi UAKm.

c. UKD atau Uji Kertas Digulung

Metode ini dimaksudkan untuk menguji benih dengan cara menanam benih diantara lembar substrat, kemudian digulung. Dapat digunakan untuk benih yang tidak peka cahaya untuk perkecambahannya. Untuk benih yang berukuran sebesar benih jagung, kedelai kacang tanah, dan sebagainya, sebstrat pengujian dilapisi plastic diluarnya sehingga metodenya menjadi UKDp (Uji Kertas Digulung dalam Plastik)

Metode Uji Kekuatan Benih.

• UKDd atau Uji Kertas Digulung Didirikan.

Metode ini digunakan untuk menguji kekuatan tumbuh benih berdasarkan spontanitas tumbuhnya benih. benih ditanam dalam satu deretan, diantara lembar substrat dan digulung. Letakkan deretan benih kira-kira 1/3 X ½ kertas dari lebar kertas, dengan arah pertumbuhan akar primer ke bagian 2/3 X ½ lebar kertas.

• UKDdp (Uji kertas Digulung dididrikan Dalam plastic).

Metode ini UKDdp sama dengan kegunaannya dengan metode UKDd, hanya perbedaanyaUKDdp digunakan untuk menguji bnih yang benih yang berukuran sebesar seprti jagung,kedelai,kacang tanah,dan sebagainya karena benihnya agak besra , metode ini mengggunakan plasrik diluarnya.

• UHDp (Uji Hoope dirobah dalam Plastik).

Metode ini dimaksud untuk mengji kekuatan tumbuh benih terhadap serangan suatu penyakit.Caranya seperti pada metode UKDp atau UKDdp hanya bedanya sebelum substrat ditutup dengan substrat lainnya, ditaburi tanah bekas pertananaman yang terserang penyakit,sehingga metode ini menjadi UHDp atau UHDdp.

(Aryunis,dkk.2009)

Uji Viabilitas Dapat melalui indikasi langsung ataupun indikasi tidak langsung

• Uji Daya Kecambah (%) uji viabilitas langsung (menguji kinerja pertumbuhan /perkecambahan benih).
•  Uji Secara Biokimia uji viabilitas tidak langsung (gejala kehidupan atau kapasitas metabolisme). Contoh: Uji Tetrazolium, Uji FeCl3, Uji DHL (Daya Hantar Listrik), dll.

(Sadjad, 1993)

2.4  Kriteria Kecambah pada Uji Viabilitas dan Vigor GAMBAR

1. Kecambah Normal

• Akar: kecambah mempunyai akar primer atau satu set akar-akar sekunder yang cukup kuat untuk menambatkan kecambah bila di tumbuhkan pada tanah atau pasir.
• Hipokotil: panjang atau pendek, tetapi tumbuh baik tanpa ada luka yang mungkin mengakibatkan jaringan pengangkut menjadi rusak.
•  Epikotil: paling kurang ada satu daun primer dan satu tunas ujung yang sempurna.
• Biji terinfeksi: infeksi pada epikotil sebagian atau seluruhnya, sedangkan hipokotil dan akar tumbuh baik. Epikotil bibit seperti ini biasanya tidak membusuk kalau tumbuh dalam keadaan atmosfir kering, bila kotiledon membuka secara alami. Akan tetapi apabila banyak kecambah yang terkena infeksi, maka pengujian ulang harus dilaksanakan sebaik mungkin pada substrat tanah atau pasir.

    

Gambar Kecambah kedelai normal umur 8 hari. c, cotyledon; d, daun pertama; h, hypokotyl; ap, akar primer; as, akar sekunder

2. Kecambah Abnormal

• Akar: tidak ada akar primer atau akar-akar sekunder yang tumbuh baik.
• Hipokotil: pecah atau luka yang terbuka, merusak jaringan pengangkut, cacat, berkeriput, dan membengkak atau memendek.
• Kotiledon: kedua kotiledon hilang dan kecambah lemah sehingga tidak vigorous.
• Epikotil: tidak ada daun primer atau tunas ujung, ada satu atau ada daun primer, tetapi tidak ada tunas ujung, epikotil membusuk, yang menyebabkan pembusukan menyebar dari kotiledon dan bibit lemah.
  

Gambar Kecambah kedelai abnormal umur 8 hari. C (cotyledon);d (daun pertama); h (hypokotyl); ap (akar primer); as (akar sekunder)

(Sumarno dan Widiati .1985)

3. Benih Tidak Berkecambah

Benih yang tidak berkecambah adalah benih yang hingga akhir periode pengujian tidak berkecambah. Benih yang tidak berkecambah meliputi:

• Benih Keras: benih yang hingga akhir periode pengujian tetap keras, sebab benih–benih tersebut tidak menyerap air.
• Benih Segar: Benih yang tidak keras dan juga tidak berkecambah hingga akhir pengujian tetapi tetap bersih, mantap, dan tampaknya masih hidup.
• Benih Mati: Benih yang pada akhir pengujian tidak berkecambah tetapi bukan sebagai benih keras maupun benih segar. Biasanya benih mati lunak, warnanya memudar, dan seringkali bercendawan.

(Mugnisjah et. al. 1994)

BAB III
METODE

 

3.1  Alat dan Bahan

3.2  Cara Kerja

3.3  Analisis Perlakuan

 

BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN

 

4.1 Uji Viabilitas

4.1.1 UAK

4.1.1.1 Benih Baru

4.1.1.2 Benih Expired

4.1.2 UDK di jurnal

4.1.2.1 Benih Baru

4.1.2.2 Benih Expired

4.1.3 UKDdp di jurnal

4.1.3.1 Benih Baru

4.1.3.2 Benih Expired

 

4.2 Uji Vigor

4.2.1 Benih baru

 

4.2.2 Benih expired

4.3 Pembahasan

Uji Viabilitas

 

Uji Vigor

 

BAB V
KESIMPULAN

 

DAFTAR PUSTAKA

Aryunis , ir , dkk 2009. Penuntun Pratikum Teknologi Benih . Fakultas Pertanian Universitas Jambi, Jambi

Harnowo, D., 2001. Prinsip-Prinsip dalam Mempertahankan Mutu Benih dalam Penyimpanan. Makalah Pada Pelatihan Pengawas Benih Tanaman Pangan dan Hortikultura Propinsi Jawa Timur. BALITKABI: Malang.

Harnowo, D., 2006. Teknologi Penaganan Benih Tanaman Pangan Guna Menghasilkan Benih Bermutu Tinggi. Makalah pada Pelatihan Penangkar Benih Tanaman Pangan se NTB, dilaksanakan oleh Dinas Pertanian Propinsi NTB: 12–15 September 2006. 19 hal.

Harrington, J.F. 1972. Seed Storage and Longevity. In T.T. Kozlowski (ed.). Seed Biology. Vol. III. Acad Press. New York.

Justice, O. L. dan Bass, L. N. 1994. Prinsip dan Praktek Penyimpanan Benih. Raja Grafindo Persada: Jakarta.

Kamil , jurnalis . 1979 . Dasar Teknologi Benih . Angkasa Raya , Padang .

Kuswanto, H. 2003. Teknologi Pemrosesan, Pengemasan, dan Penyimpanan Benih. Kanisius: Yogyakarta.

Mugnisjah, W. Q. Setiawan, A., Suwarto, dan C. Santiwa. 1994. Panduan Praktikum dan Penelitian Bidang Ilmu dan Teknologi Benih. Raja Grafindo Persada: Jakarta.

Sutopo , lita. 1993. Teknologi Benih . Fakultas Pertanian UNIBRAW . Pt raja grafindo Persada , Jakarta

Tatipata, A. Yudoyono, P., Purwantoro, A., dan W. Mangoendidjojo. 2004.Kajian Aspek Fisiologi dan Biokomi Deteriorasi Benih Kedelai dalamPenyimpanan. Jurnal Ilmu Pertanian Vol. 11 No. 2, 2004: 76-87.